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Quick Cell PCR法支原體檢測試劑盒

簡要描述:Quick Cell PCR法支原體檢測試劑盒是一種廣譜的支原體檢測試劑盒,根據支原體DNA序列,本試劑盒可以識別所有100多種至今已發現的支原體。可用于檢測所有可能含支原體的樣品,比如:(1)體外細胞培養的上清;(2)血清;(3)各種體液,如唾液、尿液、鼻腔分泌物等;(4)其他液體樣品。

  • 產品型號:AC16L064
  • 廠商性質:生產廠家
  • 更新時間:2024-08-06
  • 訪  問  量:2654

詳細介紹

品牌其他品牌貨號AC16L064
規格100 T供貨周期現貨
應用領域生物產業
Quick Cell PCR法支原體檢測試劑盒
**說明書Tips:在下文中點擊李記生物的產品名字即可跳轉至詳情頁

產品描述
  Quick Cell PCR法支原體檢測試劑盒,本試劑盒采用一對支原體特異性引物,用于對樣品的支原體基因組DNA進行PCR擴增,然后通過瓊脂糖凝膠電泳對PCR產物進行檢測。試劑盒內同時含有內參對照,用于監控PCR是否正常擴增。

  本試劑盒與MB Zell Shield 13-0050等產品相比更具優勢,替代性強,具體情況可詳見下文或咨詢銷售人員。
  本試劑盒是一種廣譜的支原體檢測試劑盒,可以識別所有100多種至今已發現的支原體;能用于檢測一切可能含支原體的樣品,比如:體外細胞培養的上清;血清;各種體液,如唾液、尿液、鼻腔分泌物等;其他液體樣品等。具有100%支原體識別率、靈敏度*、含內參條帶從而可以區分真陰性樣品和假陰性樣品、無需配套相對昂貴的熒光定量PCR儀等優點。
  經多次測試,本試劑盒有記錄可以識別在體外細胞培養中曾經報道出現的20種支原體,根據文獻報道,這些支原體基本能占污染細胞的支原體種類的100%。具體如下:(1)M. hyorhinis、(2)M. fermentans、(3)M. arginini、(4)M. hominis、(5)M. orale、(6)M. salivarium、(7)M.pirum、(8)A. laidlawii、(9)M. agalactiae、(10)M. bovis、(11)M. bovoculi、(12)A. axanthum、(13)M. buccale、(14)M. pneumoniae、(15)M. arthritidis、(16)M. pulmonis、(17)M. gallisepticum、(18)M. gallinarum、(19)M. canis、(20)Ureaplasma urealyticum(注:M.為Mycoplasma的縮寫; A.為Acholeplasma的縮寫)。

訂購信息

產品貨號規格試劑盒組分價格
AC16L064100 T支原體引物和內參(100次):206 μL;②陽性支原體DNA:50 μL;③去離子水:1.8 mL(請使用普通蒸餾水或去離子水,不能使用去內毒素的水)。1680

【注】
以下試劑需要自行準備:①普通的Taq DNA 聚合酶(推薦使用 Takara 品牌的Ex Taq Hot Start version,貨號:RR006A,已包含2.5 mM 的 dNTP)和相應的緩沖液;② 2.5 mM的dNTP;③DNA上樣緩沖液推薦使用李記生物的GelRed預染DNA上樣緩沖液(5X),貨號:AN34L047,該緩沖液已含無毒核酸染料,不需要接觸 EB 等致癌物質)。
運輸與保存條件

  冰袋運輸,-20℃保存,可以保存五年。
使用方法

1.待測樣品的準備
取換液后培養2-3 d且匯合度在90%左右的細胞培養液上清(貼壁細胞)。懸浮培養的細胞在換液傳代后,生長2-3 d再取培養液進行檢測。可以按照以下兩種方法之一進行樣品的前處理:
方法一
(1)取 150μL上述待測樣品到1.5 mL離心管內,在普通臺式離心機上1000 rpm 低速離心5 min;
(2)上述離心上清液,95 ℃加熱處理5 min(可以轉移到 PCR 管內,在 PCR 儀上進行加熱處理),簡單離心(1000g,5 s)后,取上清進行檢測。
方法二(推薦本方法,有高速離心機的的可選用本方法,可以去PCR抑制物,準確性更高。)
(1)根據濃縮倍數,可以取100 - 1500μL上述待測樣品到1.5 mL離心管內,普通臺式離心機1000 rpm 離心5 min,將離心后的上清轉移到另一個離心管內,丟棄細胞沉淀。
(2)將上清繼續13000 rpm(約16000 g)高速離心5 min,小心吸走全部上清,用50μL 5 mM Tris-HCl,pH 8.5(推薦使用,樣品可以長期保存)或者去離子水(樣品比較不穩定,只適合當天或短期內檢測使用)重懸、沉淀(沉淀中含有支原體),吹吸均勻。
(3)該重懸后的樣品可以直接檢測,也可以進行熱處理后再檢測(熱處理后,樣品保存更穩定)。熱處理具體如下:95 ℃加熱處理 5 min(可以轉移到PCR管內,在PCR儀上進行加熱處理),簡單離心(1000g,5 s)后,取上清進行檢測。
【注】:
① 這里的細胞培養上清不是指細胞經*酶消化后的離心上清,而是指至少培養 2 d后的貼壁細胞培養液上清或懸浮細胞培養液;
② 本步驟的低速離心是為了去除哺乳動物細胞,以排除其不必要的干擾。所以離心力要嚴格控制在150-200 g,該離心力下,哺乳動物細胞將被沉淀下來而支原體不會;
③ 收集的待測細胞培養液樣品如果不立即檢測,請放于-20℃或-80℃冰箱保存;
④ 如果預期待測樣品支原體含量較少(比如低溫保存的血清、臍帶血、*mei、抗生素、未使用的培養液、生物制品、極個別細胞培養上清等),可以采取措施以提高檢測的靈敏度,具體方法請看后文注意事項部分:如何提高本試劑盒檢測靈敏度。
2.PCR 體系的配制  
(1)按照25μL體系配制比例如下。如果是多樣品檢測,加兩個對照樣品后各組分總體積如下表。配制好的混合液,按每管23μL分裝到0.2 mL的PCR管中。

單個樣品體積(μL)樣品總數總體積(μL)
去離子水16.375N16.375×(N+2)×1.06
Takara 10× Ex Taq buffer(含 Mg2+)2.5N2.5×(N+2)×1.06
2.5 mM dNTP2N(N+2).06
Takara 5 Units/μL Ex Taq Hot Start0.125N0.125×(N+2)×1.06
支原體引物和內參2N(N+2)×1.06

【注】:
① 總體積中多配制 6% 是為了防止移液導致誤差,以保證每個反應管中的反應液足量;
② 如果有條件,PCR 體系的配制建議在冰上進行操作;
③ 本試劑盒不推薦使用 2× 的 PCR mixture(內含 Taq 酶、緩沖液和 dNTP),建議使用Taq酶、10×Taq 緩沖液和 dNTP 等試劑配制PCR體系;
④ 為了避免可能的污染,收到的支原體引物和內參,可以適當分裝(比如:每支 40μL)后冷凍保存;
⑤ 如果使用的是其他 Taq 酶(前提是:陰性對照的 586 bp 內參條帶必須有一定亮度,且穩定性良好,否則不能使用),酶、去離子水的加入量需要根據其說明書進行調整。
(2)加入待測樣品、陰性和陽性對照樣品。樣品檢測管中加入2μL待測樣品,陰性對照管加入2μL去離子水,陽性對照管加入2μL陽性支原體 DNA。
【注】:
① 裝有陽性支原體 DNA 的螺口管開蓋之前,低速離心或用手指捏住,用力甩一下即可;
② 進行反應體系配制的房間,與樣品前處理、加陽性對照DNA、樣品DNA的房間建議分開。
3.PCR 參數設置

1 cycle94 ℃2 min

40 cycles
94 ℃15 sec
55 ℃15 sec
72 ℃45 sec
1 cycle72 ℃5 min
1 cycle8 ℃forever


4.PCR 產物的瓊脂糖凝膠電泳
  配制含溴化乙錠(EB)的濃度為 1.5%的 DNA 瓊脂糖凝膠推薦使用李記生物的GelRed預染DNA上樣緩沖液(5X),貨號:AN34L047該產品預添加了無毒安全染料;當溴酚藍染料跑出上樣孔 3-4 cm時,停止電泳,拍照。
5.結果判斷  
PCR 擴增的結果有可能出現以下幾種情況:

電泳結果電泳結果電泳結果電泳結果電泳結果電泳結果DNA Mark
586 bp 內參條帶++-+++++-
270 bp 左右條帶-++++++++++-
結果圖示(見圖1泳道 1泳道 2泳道 3泳道 4泳道 5泳道 6泳道M
支原體污染判斷陰性極重度污染重度污染中度污染輕度污染PCR被抑制

【注】:“-"代表沒有條帶;“+"代表有條帶;“+"號越多代表條帶越強。
  支原體 PCR 擴增結果:586 bp 條帶為內參條帶,270 bp 左右的條帶為支原體特異條帶(各支原體的條帶大小會略有不同,總體在 266-280 bp 之間。注意:支原體特異條帶的大小不會超過該范圍。超過該范圍的,就是雜帶!)。隨著支原體 DNA 模板的增加,270 bp 左右的條帶會逐漸增強而 586 bp 的內參條帶會逐漸減弱,甚至消失。
  泳道1:陰性對照或者沒有支原體污染的樣品;
  泳道2:極重度支原體污染樣品;
  泳道3:重度污染樣品;
  泳道4:中度污染樣品;
  泳道5:輕度污染樣品;
  泳道6:PCR 的擴增被細胞的代謝產物抑制,導致擴增失敗。
  M:DNA marker.
注意事項

1.設有陰性對照,保證本試劑盒含有的支原體引物和內參以及整個反應體系正常。
2.只有當陰性對照的結果沒有出現 270 bp 左右的支原體特異條帶時,其他樣品的檢測結果才是可信的。
3.每次試驗陰性對照中 586 bp 的內參條帶都必須出現而且要有一定的亮度,才說明試驗成功。如果陰性對照的內參條帶經常沒有出現或者非常弱,說明試驗不成功,這時可以采取以下幾個措施: a.請使用普通蒸餾水或去離子水。不能使用去內毒素的水、DEPC 處理的水或者商品化的 DNase/RNase-free的水,這幾種水都可能會抑制 PCR 擴增的效率。 b.請使用 Takara 公司的 Ex Taq Hot Start version(推薦。貨號: RR006A,可用 400 次)。 c.可以嘗試增加 PCR 的循環數,比如:由原來的 40 個循環,增加到 45 個循環。如果采取以上幾個措施后,陰性對照的內參條帶仍然經常沒有出現或者非常弱,請聯系廠家解決。
4.如果直接使用細胞培養液上清進行檢測,而檢測結果顯示該樣品 586 bp 條帶和 270 bp 左右的條帶都沒有出現(如圖 1,泳道 6)或者內參條帶非常微弱,在排除 PCR試劑的問題后,說明該樣品含有抑制 PCR 擴增的代謝產物。
5.防 DNA 污染注意事項: a.強烈建議所有操作全部使用進口濾芯吸頭(比如:Axygen 濾芯吸頭)進行操作,以免試劑被污染。 b.“PCR 體系配制的房間、移液槍"(不要使用細胞培養室的移液槍!)和“PCR 產物的電泳房間、移液槍"一定要分開,不能在同一個房間進行,也不能使用相同的移液槍進行操作。 c.PCR 產物是導致假陽性的主要原因,PCR 產物不要在 PCR 體系配制的房間中打開。 d.樣品處理的房間和移液槍,如有條件,建議也分開。 e.收到的支原體引物和內參,可以分裝(比如 40 μL一支)后保存。
6.如發現細胞被支原體污染,推薦使用李記生物的Quick Cell支原體祛除預防試劑盒,貨號:AC16L066以及EZ 水浴鍋抑菌劑,貨號:AC16L162 EZ 細胞房除菌劑,貨號:AC16L143。產品詳情可咨詢銷售人員或見李記生物網站。
7.支原體檢測樣品可以分成兩類:①用含血清的培養液培養的哺乳動物細胞上清液,由于該條件非常適合支原體生長,培養數天后,支原體密度一般較高,可達 107-9/mL,可以直接檢測。②低溫保存的血漿、血清、臍帶血、*酶、抗生素、未使用的培養液等樣品,由于這些樣品即使有支原體污染,支原體含量一般很少,直接使用快速支原體檢測試劑盒進行檢測,往往檢測不出來。這些樣品建議:(1)
對樣品的支原體進行離心濃縮處理;(2)使用支原體液體培養基(必須同時接種不含jing氨酸和含jing氨酸的兩種支原體液體培養基)培養 3-7 d后,再進行檢測。具體方法請參考李記生物 Quick Cell 發光法支原體檢測試劑盒,貨號:AC16L062 說明書中后的注意事項部分。該方法速度較慢,需要 3-7 d,但是可靠性高。
8.該產品主要用于細胞上清支原體污染檢測,僅限于科學實驗研究使用,不得用于臨床診斷、治療等領域。
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